Занятие № 8 Инфекционная безопасность. Содержание: 1. Обработка инструментария медицинского назначения - дезинфекция, педстерилизационная очистка. 2. Моющие растворы и комплексы (биолот, СМС, моющий комплекс, содовый раствор). 3. Техника приготовления дезинфицирующих и моющих растворов. 4. Контроль качества предстерилизационной очистки, постановка проб. 5. Профилактика профессиональных заражений инфекциями, передающимися парентеральным путем. 6. Состав аварийной аптечки. 7. Укладка для забора крови Ф-50. 1. Обработка инструментария медицинского назначения - дезинфекция, педстерилизационная очистка. Как известно, инфицированные инструменты и материалы являются приоритетными факторами передачи гемоконтактных инфекций. Снижение риска заражения достигается применением одноразовых расходных материалов, а также путем трехступенчатой обработки медицинских изделий многоразового использования (дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация). Общие правила организации указанных процессов установлены «Методическими указаниями по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения» (МУ-287-113). Их утвердил Департамент Госсанэпиднадзора Минздрава РФ 30.12.1998 г. Кроме того, применяются утвержденные НИИ дезинфектологии Роспотребнадзора методические пособия по применению конкретных дезинфицирующих средств. Что такое дезинфекция ВСПОМИНАЕМ МАТЕРИАЛ Этот термин обозначает уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на всех поверхностях в помещениях, в том числе на полу, стенах, ручках дверей, выключателях, подоконниках, а также на жесткой мебели, поверхностях врачебного оборудования, в воздухе помещений, на посуде, белье, изделиях медицинского назначения и предметах ухода за больными, санитарно-техническом оборудовании, биологических жидкостях. Словом, дезинфекцию должны проходить все инструменты и расходные материалы, которые используются в работе любого ЛПУ. Задачей дезинфекции является предупреждение или ликвидация накопления, размножения и распространения возбудителей заболеваний. И в первую очередь, если мы говорим о больницах, внутрибольничных инфекций. Дезинфекция может быть профилактической и очаговой. Профилактическая дезинфекция проводится для защиты людей от возможного заражения. В лечебных учреждениях она выполняется в виде текущей ежедневной влажной уборки и генеральной уборки эпидзначимых кабинетов (операционных, перевязочных) один раз в неделю. Очаговая дезинфекция проводится в случае возникновения или подозрения на возникновение инфекционного заболевания. Препарат для проведения дезинфекции и его концентрация выбираются исходя из конкретного инфекционного заболевания. В зависимости от вида медицинского изделия проводят дезинфекцию высокого (ДВУ), промежуточного (ДПУ) и низкого уровней (ДНУ). А теперь условно разделим обрабатываемые предметы на несколько видов. «Некритические» контактируют с неповрежденной кожей. «Полукритические» контактируют со слизистыми оболочками или поврежденной кожей. «Критические» проникают в стерильные ткани организма или сосуды, контактируют с кровью или инъекционными растворами. ДВУ используется для обработки «критических» предметов. При этом методе обработки погибают все микроорганизмы, кроме спор бактерий. Для ДВУ применяют глутаровый альдегид, диоксид хлора, 6 % раствор перекиси водорода и средства на основе надуксусной кислоты. Эти химические средства можно использовать и для стерилизации. Однако при стерилизации данными веществами время обработки значительно увеличивается. ДПУ используется для обработки «полукритических предметов. При проведении ДПУ погибают вегетативные формы бактерий, в том числе микобактерии, большинство вирусов и грибов. Однако споры бактерий в этих условиях выживают. Мелкие нелипидные вирусы, например энтеровирусы, риновирусы, более устойчивы к бактерицидным средствам. Крупные же липидные вирусы, такие как аденовирусы, вирус гепатита В и ВИЧ, обычно погибают при обработке дезинфектантами промежуточного уровня. К дезинфекционным средствам, используемым для ДПУ, относятся практически все препараты, концентрация которых готовится по режиму уничтожения бактерий и в соответствии с методическими указаниями к каждому используемому препарату. ДНУ используется для обработки «некритических» и некоторых «полукритических» предметов. Например, для обработки ванн, которые применяют при гидротерапии пациентов с поврежденной кожей. После ДНУ погибают вегетативные формы большинства видов бактерий, вирусы и грибы. Не реагируют на этот метод обработки споры бактерий, микобактерии и мелкие нелипидные вирусы. К средствам ДНУ относятся соединения на основе 70 % и 90 % этилового или изопропилового спирта, хлорсодержащие препараты, некоторые фенолсодержащие средства и йодофоры. Среди дезинфектантов низкого уровня также можно назвать препараты на основе четвертичных аммониевых соединений. Применяются 4 основных метода дезинфекции: Механический метод – это проветривание, вентиляция помещений, стирка белья, обработка поверхностей пылесосом, протирание их влажной ветошью. Физический метод заключается в высокотемпературной обработке Используются кипячение в дистиллированной воде или воде с добавлением натрия двууглекислого (питьевая сода), паровой метод в стерилизаторе (автоклаве), воздушный метод в суховоздушном шкафу. Этот метод надежен, экологически чист и безопасен для персонала. Химический метод позволяет обрабатывать медицинские предметы различными химическими веществами в жидком, газообразном состоянии. Изделия погружают в дезраствор, налитый в пластмассовые, стеклянные или покрытые эмалью без повреждений емкости. Для проведения такой дезинфекции рекомендуется применять специальные контейнеры, в которых изделия размещаются на перфорированных решетках. Это снижает риск инфицирования и травматизации персонала. Емкости с растворами дезинфицирующих средств должны быть снабжены крышками, иметь надписи с указанием названия средства, его концентрации, срока приготовления и использования. Биологический метод основан на использовании антагонизма различных видов микроорганизмов. Так, при использовании бактериофагов, то есть вирусов бактерий, уничтожаются стафилококки, синегнойная палочка, брюшнотифозные бактерии и т. д. К сведению. Бактериофаги узко специфичны. Например, стафилококковый бактериофаг, проникая в микробную клетку стафилококка, уничтожает только ее. Для обработки медицинских изделий их не применяют, но зато их можно достаточно эффективно использовать для лечения людей и для обеззараживания поверхностей, особенно там, где сформировался госпитальный штамм (например, роддома). Также бактериофаги хорошо знакомы работникам предприятий коммунальной сферы. Их используют для обеззараживания сточных вод на полях фильтрации. Средства химической дезинфекции Средства химической дезинфекции наиболее часто используется в ЛПУ. Большинство таких средств по химическому составу можно разделить на 7 групп. В состав галогенсодержащих веществ входят в качестве активного действующего вещества хлор, бром, йод. Препаратами из этой группы являются, в частности, Хлорамин Б, Хлорэффект, гипохлорид натрия, Де-хлор, нейтральный анолит, Сульфохлорантин, Пресепт, хлоргексидин глюконат и т.д. В кислородсодержащей группе препаратов действующим веществом является кислород, выделяющийся из перекиси водорода, перекисных соединений, надкислот. Препаратами этой группы являются, например, перекись водорода, Оксидезин, Пероксимед, Окадез, Клиндезин Окси, Виркон. Средства на основе катионных поверхностно-активных веществ (ПАВы) представляются весьма перспективными, так как позволют совмещать дезинфекцию и предстерилизационную обработку. ПАВы не вызывают коррозию медицинских инструментов. К препаратам из этой группы относятся АХД 2000 специаль, Аламинол и Аламинол плюс, Бриллиант, Велтолен, Ника-дез, Премьер, Самаровка, Септодор форте, Вегосепт. Гуанидсодержащие средства созданы на основе сложных органических соединений. Они активны в отношении широкого спектра микроорганизмов. Препаратами этой группы являются Лизоформин специаль, Лизетол АФ (при его использовании металлические инструменты полностью очищаются, причем без коррозии), Пливасепт 5%, хлоргексидин биглюконат (Гибитан), Фогуцид, который на обработанной поверхности образует защитную пленку, действующую от 3 до 7 суток. В состав альдегидсодержащих средств входят глутаровый или янтарный альдегид. Препараты этой группы обладают выраженным бактерицидным, вирулоцидным, фунгицидным, спороцидным действием. Вместе с тем они отрицательно действуют на макроорганизмы. Часть этих дезсредств может использоваться не только для дезинфекции, но и для стерилизации инструментария, а также для проведения дезинфекции эндоскопического оборудования по режиму ДВУ. Из этой группы чаще всего используются Гигасепт ФФ, Сайдекс, Лизоформин 3000, Секусепт Форте. Спирты. Это группа препаратов на основе этанола, пропанола, изопропанола. Такие средства как Бациллол плюс, Деконекс Соларсепт используют для дезинфекции поверхностей и оборудования. 70 % этиловый спирт используется как кожный асептик. Среди фенолсодержащих препаратов можно рекомендовать Амоцид и Амоцид 2000, которые эффективны для проведения текущей и заключительной дезинфекции в очагах туберкулеза для обеззараживания биоматериала от больных. Как проводят дезинфекцию Медицинские изделия погружают в дезраствор сразу же после их использования. При этом дезраствор должен полностью покрывать инструменты не менее 1 см над их поверхностью. Изделия сложной конфигурации дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором так, чтобы в них не оставалось пузырьков воздуха. Сильно загрязненные инструменты нужно подвергать двукратной обработке. Хлорсодержащие средства, например, Хлорамин Б, Клорсепт, применяют в основном для дезинфекции изделий медицинского назначения из стекла, пластмассы, резины, коррозионно-стойкого материала или отработанного перевязочного материала и одноразовых инструментов. Очистка с помощью ерша резиновых изделий не допускается! Для дезинфекции многоразового металлического инструментария рекомендуется использовать препараты, которые не вызывают коррозии. Правда, эти дезсредства стоят дороже. Но экономить не стоит. Ведь стоимость металлических многоразовых инструментов намного выше. По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают. Оставшиеся загрязнения оттирают с помощью ершей, щеток, салфеток под проточной питьевой водой либо в специальных моющих аппаратах. Обратите внимание. Поскольку альдегидосодержащие дезсредства достаточно токсичны, при работе с ними персоналу следует соблюдать особые меры предосторожности: * рабочие растворы из концентратов готовьте в отдельных хорошо вентилируемых помещениях с достаточной кубатурой; * во время приготовления рабочих растворов и при работе с ними защищайте органы дыхания респираторами, кожу рук перчатками, а глаза очками; * рабочие растворы должны находиться только в емкостях с плотно закрытыми крышками! Используйте специальные ванночки - стерилизаторы из полиэтилена. Емкость следует открывать только при необходимости, защищая органы дыхания; * нельзя разводить исходный концентрат теплой и тем более горячей водой. Это усиливает вредные испарения с поверхности раствора; * промывка изделий под проточной водой до дезинфекции не допускается. Ведь аэрозоль, образующийся в процессе мытья, может инфицировать персонал, проводящий обработку, а также поверхности помещений. Подчеркнем, однако, что при применении многих альдегидосодержащих дезинфектантов очистка медицинских изделий от загрязнения все же необходима. Дело в том, что такие дезинфектанты фиксируют белковые загрязнения. Это затрудняет процесс дезинфекции. Поэтому предварительная очистка в данном случае должна проводиться с соблюдением противоэпидемических принципов. Используются специальные емкости. Промывные воды, салфетки, использованные для очистки, обеззараживаются одним из хлорсодержащих дезинфектантов. Практическими вопросами проведения дезинфекции в любом ЛПУ занимаются в основном медицинские сестры. Задача администрации медучреждения - обеспечить приобретение эффективных дезпрепаратов, замену их с периодичностью не реже 8-12 месяцев, чтобы предотвратить формирование антибиотикоустойчивых микроорганизмов. Предстерилизационная обработка Извлечение из СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»[1] <…> II. Организация дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в организациях, осуществляющих медицинскую деятельность <…> 2.1. Медицинские изделия многократного применения подлежат последовательно: дезинфекции, предстерилизационной очистке, стерилизации, последующему хранению в условиях, исключающих вторичную контаминацию микроорганизмами. <…> Наиболее критичным этапом обработки является предстерилизационная очистка, предусматривающая непосредственный контакт персонала с изделием. Именно на этом этапе довольно часто возникают аварийные ситуации (уколы, порезы), которыми нередко пренебрегают, поэтому не принимают экстренных мер профилактики. Однако инструментарий, прошедший только один этап обработки — дезинфекцию, не является биологически безопасным. Докажем это утверждение, перечислив типичные ошибки, допускаемые при дезинфекции: • использование неразрешенных к применению средств и методов дезинфекции (на средство не оформлена необходимая разрешительная документация либо оно не может использоваться в лечебно-профилактических организациях, является фальсификатом и др.); •снарушение условий хранения и транспортировки дезинфекционных средств (несоблюдение температурного режима хранения, воздействие прямых солнечных лучей, истекший срок годности исходного препарата и др.); • неправильный выбор средства дезинфекции (не предназначено для уничтожения возбудителей вирусных гепатитов В, С и ВИЧ); • неправильно выбранный режим дезинфекции (не обеспечивает гибель возбудителей гемоконтактных инфекций); • некорректно проведенная дезинфекция (при изготовлении раствора дезинфектанта допущена ошибка в расчете концентрации, не выдержано время экспозиции, истек срок годности рабочего раствора и др.). Извлечение из СП 3.5.1378-03 «Санитарно-эпидемиологические требования к организации и осуществлению дезинфекционной деятельности»[2] <…> III. Требования к осуществлению дезинфекционной деятельности <…> 3.6.5. Не допускается применение для обеззараживания изделий медицинского назначения дезинфицирующих средств, не обладающих вирулицидным действием. <…> Наличие одной или нескольких ошибок сводит качество дезинфекции практически к нулю, как следствие, на этапе предстерилизационной очистки персонал имеет дело с опасным в биологическом плане инструментарием. Кроме того, риск заражения персонала на втором этапе обработки инструментария обусловлен следующими факторами: • непосредственный контакт персонала с медицинскими изделиями. В большей степени это относится к очистке вручную, однако и при механизации процесса персонал контактирует с изделиями при их перекладывании и сортировке; • пренебрежение средствами индивидуальной защиты, в первую очередь перчатками. Еще одна проблема связана с недостаточной информированностью персонала. Большинство современных средств дезинфекции содержат моющий компонент и предназначаются для проведения дезинфекции, совмещенной с предстерилизационной очисткой. Однако это не значит, что при погружении в раствор такого средства изделие одновременно проходит два этапа обработки. По окончании времени дезинфекции обязательно должна быть проведена очистка каждого изделия ручным или механизированным способом. Ручной способ подразумевает обработку каждого изделия в моющем растворе ершом или ватно-марлевым тампоном в течение 0,5–1 минуты. Механизированная очистка осуществляется с использованием специального оборудования, разрешенного к применению на территории Российской Федерации, имеющего сертификат соответствия и инструкцию по эксплуатации. В чем же заключается суть совмещения дезинфекции с предстерилизационной очисткой? Ответ прост: между двумя этапами не требуется смена раствора дезинфектанта, содержащего моющий компонент. Иными словами, предстерилизацияонная очистка изделий осуществляется в том же растворе, в котором проводилась их дезинфекция. Все это, как правило, отражается в инструкции по применению средств дезинфекции, однако на практике ошибки в совмещении двух этапов обработки все же встречаются. На схемах 1, 2, 3 представлены этапы предстерилизационной очистки, осуществляемой ручным способом, а также совмещенной с дезинфекцией. Схема 1. Этапы проведения предстерилизационной очистки ручным способом[3] 1-й этап - Промывание проточной водой после дезинфекции 2-й этап - Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия в разобранном виде с заполнением всех каналов и полостей на 15–60 минут в зависимости от применяемого средства 3-й этап - Мойка каждого изделия в моющем растворе ершом или ватно-марлевым тампоном в течение 0,5–1 минуты (обращаем внимание на температуру раствора моющего средства, если данное условие оговаривается в инструкции по применению моющего средства) 4-й этап - Ополаскивание проточной водой в течение времени, предусмотренного инструкцией к применяемому средству (раковина для ополаскивания инструментов не должна применяться для мытья рук медицинского персонала) 5-й этап - Ополаскивание дистиллированной водой с последующей сушкой горячим воздухом Схема 2. Этапы проведения предстерилизационной очистки, совмещенной с дезинфекцией, ручным способом 1-й этап - Замачивание в растворе средства, обладающего дезинфицирующими и моющими свойствами 2-й этап - Мойка каждого изделия в моющем растворе ершом или ватно-марлевым тампоном в течение 0,5–1 минуты (обращаем внимание на температуру раствора, если данное условие оговаривается в инструкции по применению средства) 3-й этап - Ополаскивание проточной водой в течение времени, предусмотренного инструкцией к применяемому средству (раковина для ополаскивания инструментов не должна применяться для мытья рук медицинского персонала) 4-й этап - Ополаскивание дистиллированной водой с последующей сушкой горячим воздухом Схема 3. Этапы проведения предстерилизационной очистки, совмещенной с дезинфекцией, механизированным способом 1-й этап - Помещение изделий в оборудование, предназначенное для дезинфекции и предстерилизационной очистки. Используются средства дезинфекции с моющим эффектом; или отдельно средства дезинфекции и моющие средства; или только моющие средства, а дезинфекция осуществляется термическим способом; или другое в соответствии с инструкцией по эксплуатации оборудования 2-й этап - Ополаскивание проточной водой в течение времени, предусмотренного инструкцией к применяемому средству. Режим использования может быть включен в цикл работы оборудования 3-й этап - Ополаскивание дистиллированной водой с последующей сушкой горячим воздухом. Режим ополаскивания дистиллированной водой и сушки может быть включен в цикл работы оборудования Наиболее перспективной является предстерилизационная очистка механизированным способом, среди преимуществ которой: • сокращение тактильного контакта рук медицинского персонала с обрабатываемым инструментарием (биологическая безопасность персонала); • сокращение времени обработки большого объема медицинских изделий (экономическая эффективность); • предотвращение повреждения дорогостоящих изделий и инструментов, увеличение срока их службы (экономическая эффективность); • значительное улучшение качества очистки медицинских инструментов и изделий сложной конфигурации (биологическая безопасность пациента). В настоящее время на территории Российской Федерации зарегистрировано два существенно отличающихся друг от друга типа оборудования для предстерилизационной очистки. Первый основан на применении ультразвука, второй представлен так называемыми термодезинфекторами, в которых дезинфекция осуществляется термическим методом, а предстерилизационная очистка производится с использованием моющих средств, как правило, не содержащих дезинфекционного компонента. Преимуществом использования второго типа оборудования является обеспечение полного цикла дезинфекционно-предстерилизационных мероприятий, поскольку термодезинфектор последовательно производит дезинфекцию, очистку, ополаскивание и сушку изделий. От персонала лишь требуется правильно осуществить загрузку и извлечение инструментария. Важный момент — выбор средств для предстерилизационной очистки. Современный рынок предлагает нам два принципиально разных подхода. Первый предполагает использование моющих средств на основе поверхностно-активных веществ (ПАВ), второй — на основе ферментов. Препараты обеих групп зарегистрированы на российском рынке. Наиболее широкое применение нашли средства для предстерилизационной очистки на основе ПАВ, обладающие высокими моющими свойствами. К недостаткам таких средств относятся: • высокое пенообразование (при использовании механизированного способа предстерилизационной очистки этот фактор может быть критичным ввиду несовместимости оборудования с моющим средством); • образование пленки на поверхности обрабатываемых изделий, что требует тщательного смывания препарата; • достижение максимального моющего эффекта возможно лишь при определенной заданной температуре, что обуславливает необходимость поддержания температуры раствора при проведении предстерилизационной очистки. Препараты на основе ферментов содержат бактериальные протеазы, которые способны разрушать не только клеточные стенки бактерий и белковые оболочки вирусов, но и биопленки. При этом такие моющие средства, как правило, активны при комнатной температуре и обладают низким пенообразованием. Широкое применение данных препаратов ограничивает более высокая стоимость по сравнению со средствами на основе ПАВ. (Аниозим, Сайдезим) Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения осуществляется посредством постановки азопирамовой (амидопириновой) и фенолфталеиновой проб. Наличие остаточных количеств крови оценивается с помощью азопирамовой или амидопириновой, моющих средств — фенолфталеиновой проб. Обратим внимание, что фенолфталеиновая проба работает только в щелочной среде и пригодна для контроля в том случае, если для предстерилизационной очистки использовалось моющее средство, pH которого более 8,5. Показатель pH, как правило, указывается в инструкции к каждому конкретному средству. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения является неотъемлемой частью системы производственного контроля, действующей в лечебно-профилактической организации. Документом, доказывающим факт проведения такого контроля, является журнал учета качества предстерилизационной обработки . Извлечение из СанПиН 2.1.3.2630-10 <…> II. Организация дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в организациях, осуществляющих медицинскую деятельность <…> 2.14. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят ежедневно. Контролю подлежат: в стерилизационной — 1 % от каждого наименования изделий, обработанных за смену; при децентрализованной обработке — 1 % одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее трех единиц. Результаты контроля регистрируют в журнале. <…> Таким образом, от правильно организованной предстерилизационной обработки многоразового инструментария зависит биологическая безопасность как пациентов, так и персонала клиники. Повышению уровня безопасности способствует внедрение в практику новых средств, методов и технологий, которые существенно улучшают качество обработки изделий и сокращают контакт персонала с потенциально опасными изделиями. Контрольные мероприятия необходимо рассматривать как элемент системы менеджмента качества медицинской помощи, а не как рутинный процесс, которым можно пренебречь. Для инструментария, который соприкасается со слизистыми оболочками и ранами, в том числе операционными, одной дезинфекции недостаточно. Требуется стерилизация. Но перед этим проводят предстерилизационную обработку. Цель — удаление всех мелких частиц, оставшихся после операции, различных белковых загрязнений. При предстерилизационной обработке используют специально приготовленные растворы, в которые входят вода, перекись водорода и моющие средства «Астра», «Лотос», «Айна», «Прогресс». Можно также применять дезинфектанты, специально предусмотренные для совмещения дезинфекции с предстерилизационной обработкой. Такие препараты очень удобны в работе, позволяют экономить рабочее время персонала, тем самым сокращая затраты ЛПУ. В настоящее время выбор комбинированных препаратов достаточно широк. При предстерилизационной очистке разъемные медицинские изделия замачиваются в разобранном виде. Все предметы полностью погружаются в раствор с заполнением всех полостей. О качестве же дезинфекции и предстерилизационной подготовки медицинского инструментария судят по результатам биологических и химических анализов. Важно. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят в ЛПУ ежедневно, под руководством старшей медицинской сестры. Проверке подлежит 1 % изделий от партии, но не менее трех единиц. Качество очистки оценивают путем постановки азопирамовой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. При положительной азопирамовой пробе не позднее чем через 1 минуту после нанесения реактива появляется фиолетовое окрашивание, которое вскоре переходит в розово-сиреневое или буроватое. При положительной фенолфталеиновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива. Если пробы на кровь или на остатки щелочных компонентов моющих средств, оказываются положительными, всю партию изделий повторно очищают до получения отрицательных результатов. Предстерилизационная очистка является вторым этапом обработки медицинских инструментов, которая проводится после дезинфекции и отмывки изделий от дезинфектанта, с целью окончательного удаления остатков белковых, жировых, механических загрязнений, лекарственных препаратов и т.д. От полноты и качества проведения предстерилизационной очистки непосредственно зависит эффективность последующей стерилизации, поэтому нормативами в практику введен обязательный контроль качества предстерилизационной очистки, осуществляемый как самим лечебно-профилактическим учреждением, так и специалистами Роспотребнадзора. Это, в частности, пробы, регистрирующие остатки крови на инструментах -азопирамовая и амидопириновая,- а также выявляющие остаточные количества моющих средств: фенолфталеиновая, и определение рН (для аптечной посуды). Для предстерилизационной очистки используют средства, указанные в таблице приложения ниже. Средства для предстерилизационной очистки 1. Аламинол ("НИОПИК" Россия). Концентрация рабочего раствора: 5% или 8%. Способ очистки - ручной. Изделия: изделия из стекла, пластмасс, резины, металлов (за исключением углеродистой стали), в т.ч. стоматологический инструментарий 2. Анолиты Концентрация рабочего раствора: 0,01%, 0,02%, 0,03%, 0,05% Способ очистки - ручной. Изделия: изделия из стекла, пластмасс, резины, коррозионностойких металлов (сплавы титана) 3. Биолот, Биолот-1. Концентрация рабочего раствора: 0,15% - для механизированного (ротационного) способа очистки 0,3% - для механизированного струйного, ультразвукового способа, ершевания 0,5% - для ручного способа Изделия: из резины, стекла, пластмасс, металлов, в т.ч. стоматологические инструменты, эндоскопы, инструменты к гибким эндоскопам 4. Бланизол (Лизоформ) Концентрация рабочего раствора: 1% Способ очистки - ручной. Изделия: из резины, стекла, пластмасс, металлов, в т.ч. эндоскопы 5. Велтолен ("ВЕЛТ", Россия) Концентрация рабочего раствора: 1%, 1,5% Способ очистки - ручной, механизированный ультразвуковой Изделия: из стекла, пластмасс, резины, металлов, в т.ч. стоматологические инструменты и эндоскопы 6. Деконекс 50 ФФ ("Бюрер Хеми АГ", Швейцария) Концентрация рабочего раствора: применяют без разведения Способ очистки - ручной Изделия: из стекла, пластмасс, резины, металлов, в т.ч. стоматологические инструменты 7. Лотос, Астра, Прогресс Концентрация рабочего раствора: 0,5% для ультразвуковой очистки, 1,5% для ручного способа - с кипячением Способ очистки - ручной, механизированный ультразвуковой Изделия: из стекла, пластмасс, резины, металлов 8. Пероксимед (Россия) Концентрация рабочего раствора: 5% для ультразвуковой очистки, 3% для ручного способа Способ очистки - ручной, механизированный ультразвуковой Изделия: из стекла, пластмасс, резины, коррозионностойких металлов 2. Моющие растворы и комплексы (биолот, СМС, моющий комплекс, содовый раствор). Техника приготовления дезинфицирующих и моющих растворов. Биолот - содержит ПАВ, ферменты протеолитического комплекса I.МОЮЩИЙ РАСТВОР 0,5% «БИОЛОТ» (ручной способ предстерилизационной очистки) Оснащение: спецодежда: маска, халат, перчатки; моющее средство «Биолот» (порошок), деревянная лопаточка, водный термометр, емкость для приготовления моющего раствора с клеенчатой биркой, мерная емкость с отметкой на 5 грамм для порошка «Биолот», мерная емкость для воды. Последовательность действий: 1. Надеть спецодежду. 2. Отмерить в емкость для моющего раствора и подогреть до температуры 45 С. 3. Добавить 5 грамм моющего средства «Биолот», используя мерную емкость. 4. Тщательно размешать до полного растворения деревянной лопаточкой. 5. Сделать отметку на бирке о времени приготовления раствора, поставить Ф.И.О. медицинской сестры. 6. Снять спецодежду, вымыть руки. Моющий раствор «Биолот» применяется однократно. СМС - Лотос, Прогресс, Астра. Применяются в составе моющего комплекса с перикисью водорода II. МОЮЩИЙ РАСТВОР С ПРИМЕНЕНИЕМ РАСТВОРА ПЕРГИДРОЛЯ Оснащение:спецодежда:маска, халат, резиновые перчатки; любое моющее средство: «Лотос», «Астра», «Прогресс» (порошок), раствор 27,5% пергидроля, водный термометр, деревянная лопаточка, мерная емкость промаркированная «пергидроль», мерная емкость для моющего средства с отметкой 5 грамм, мерная емкость для воды, емкость для моющего раствора с клеенчатой биркой. Последовательность действий: 1. Надеть спецодежду. 2. Поместить 5 гр. любого моющего средства в приготовленную емкость для моющего раствора с клеенчатой биркой. 3. Добавить 17 мл 27,5% раствора пергидроля к моющему средству, используя мерную емкость с маркировкой «пергидроль». 4. Долить питьевой воды 978 мл, используя мерную емкость для воды. 5. Тщательно размешать деревянной лопаточкой до полного растворения. 6. Подогреть до температуры 500С на момент погружения изделий медицинского назначения. 7. Сделать отметку на бирке о времени приготовления раствора, поставить Ф.И.О. медицинской сестры. 8. Снять спецодежду, вымыть руки. Моющий раствор с применением пергидроля можно использовать в течение суток с момента приготовления, подогревать его можно не более 6 раз. Появление розовой окраски говорит о непригодности моющего раствора. Содовый раствор - применяется 2% раствор для совмещенной дезинфекции и предстерилизационной очистки; кипячение в течении 15 минут с момента закипания. Оснащение: спецодежда: маска, халат, перчатки; Сода (порошок), деревянная лопаточка, емкость для приготовления моющего раствора с клеенчатой биркой, мерная емкость с отметкой на 20 грамм для порошка соды, мерная емкость для воды. Последовательность действий: 1. Надеть спецодежду. 2. Отмерить в емкость для моющего раствора 980 мл воды 3. Добавить 20 грамм порошка соды, используя мерную емкость. 4. Тщательно размешать до полного растворения деревянной лопаточкой. 5. Сделать отметку на бирке о времени приготовления раствора, поставить Ф.И.О. медицинской сестры. 6. Снять спецодежду, вымыть руки. Содовый раствор применяется однократно. 4. Контроль качества предстерилизационной очистки, постановка проб. Качество предстерилизационной очистки контролируют, определяя: - кровь - с помощью азопирамивой пробы; - масляные лекарственные загрязнения - с помощью пробы с суданом - 3; - остатки моющих средств — с помощью фенолфталеиновой пробы. Технология постановки азопирамовой пробы Цветные реакции на кровь. На 1 литр раствора отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина. Вещества смешивают в сухой посуде и заливают 95% этиловым спиртом до объема 1,0 л. смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при 4°С; в холодильнике - 2 месяца; в темноте при комнатной температуре (18-23°С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих характеристик. Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3% перекиси водорода. Помните: рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 часов, иначе может появиться спонтанное розовое окрашивание. При температуре 25° С раствор розовеет быстро, поэтому его используют в течение 30-40 минут. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор на ярком свету, при повышенной температуре (возле нагревательных приборов). Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют в случае необходимости: 2-3 капли наносят на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению (может появиться буроватое окрашивание); Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, реактивом пользоваться нельзя. Фенолфталеиновая проба Цветные реакции на кровь. Готовится спиртовый раствор 1% фенолфталеина, который хранится во флаконе с притертой крышкой в холодильнике в течение 1 месяца. Методика постановки проб. Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или 2-3 капли реактива с помощью пипетки наносят на изделия. В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив в шприце оставляют на 0,5-1 минуту, после чего вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц, и, последовательно меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая на марлевую салфетку 3-4 капли. При проверке качества очистки катетеров и других полых изделий реактив вводят внутрь с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия в течение 0,5-1,0 минуты, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия. 5. Профилактика профессиональных заражений инфекциями, передающимися парентеральным путем. Особенностью эпидемиологической ситуации современного мира являются повсеместно высокие уровни заболеваемости гемоконтактными инфекциями, т. е. инфекциями, передающимися через кровь, контаминированную возбудителями, прежде всего вирусами гепатитов В, С и вирусом иммунодефицита человека. На сегодняшний день известно более 30 нозологических форм инфекционных болезней, основным фактором передачи которых является кровь. С начала 80-х годов прошлого века тенденция распространения этих заболеваний только усиливается. этому способствуют такие социальные явления, как наркомания, миграционные процессы, войны, а также поведение, принятое в отдельных популяциях. В этих условиях вопросы внедрения безопасных методик проведения парентеральных манипуляций для пациентов и медицинского персонала приобретают все бо2льшую актуальность. Наиболее опасными в плане риска инфицирования являются манипуляции, связанные с нарушением целостности кожи и слизистых в результате контакт-ситуации. Контакт или контакт-ситуация – чрескожная травма (укол иглой или порез), а также контакт слизистой оболочки или поврежденной кожи с кровью или другими биологическими жидкостями, которые являются потенциально опасными с точки зрения инфицирования. Контактситуацию у медицинского персонала при проведении инъекций, перевязок, работы с использованным инструментарием и др. можно отнести к производственной травме. Производственная травма – внезапное повреждение организма человека, вызванное несчастным случаем на производстве. Повторение несчастных случаев, связанных с производством, называется производственным травматизмом. Медицинские работники должны знать, что контакт с биологическим жидкостями человека относится к вредным производственным факторам, в частности к биологическим вредным факторам. Приведем формулировку вредного производственного фактора в соответствии с Руководством по гигиенической оценке факторов рабочей среды и трудового процесса. Критерии и классификация условий труда. Р 2.2.2006-05 [2]. Вредный производственный фактор – фактор среды и трудового процесса, воздействие которого на работающего при определенных условиях (интенсивность, длительность и др.) может вызвать профессиональное заболевание, временное или стойкое снижение работоспособности, повысить частоту соматических и инфекционных заболеваний, привести к нарушению здоровья потомства. По данным СДС, риск инфицирования при однократном порезе или уколе составляет: гепатитами В и C – 3–30 и 1,8% соответственно, ВИЧ – 0,3–0,5% случаев. О высоком риске заболевания медицинских работников гемоконтактными инфекциями свидетельствуют данные проведенного социологического исследования в одной из московских больниц. В многопрофильной больнице, имеющей как хирургические, так и терапевтические отделения, показатели распределились следующим образом: на частоту травматизма 1 раз в неделю указали 25% медицинских сестер и 23,5% хирургов; 1 раз в месяц – 40,3 и 41,2% соответственно, 1 раз в полгода – 11,1 и 32,4%, 1 раз в год – 9,7% медсестер. Таким образом, частота травматизма 1 раз в неделю и 1 раз в месяц является в одинаковой степени характерной для этих категорий медицинских работников [3]. В связи с наличием массивного резервуара инфекции среди населения, обращающегося за медицинской помощью, сохраняется высокий риск внутрибольничного инфицирования, в т. ч. медицинских работников. По данным американской официальной статистики, за последние 5 лет 52 чел. заразились ВИЧ-инфекцией от больных в результате производственного травматизма. Ретроспективный анализ за несколько лет показывает, что риск заражения гепатитом В (косвенный показатель риска заражения гемоконтактными инфекциями) среди медработников разных профессиональных категорий не одинаков. На протяжении всего периода наблюдения заболеваемость средних медицинских работников превышала заболеваемость среди других категорий по причине более частых контактов с кровью пациентов. Риск заражения ВИЧ возникает при следующих ситуациях: контакт с потенциально опасными биологическими жидкостями (кровь, жидкости, содержащие видимую кровь); наличие явных следов крови на травмирующем инструменте; предшествующее введение иглы в вену или артерию больного; сравнительно большая глубина раны. Риск возрастает, если медицинский персонал работает в специализированных отделениях для лечения больных СПИДом. В этом случае их труд относится к 4-му – самому высокому классу опасности. Согласно принятой классификации (Р 2.2.2006-05) к 4-му классу относятся опасные (экстремальные) условия труда, характеризуемые уровнями факторов рабочей среды, которые в течение рабочей смены создают угрозу для жизни, высокий риск развития острых профессиональных поражений, в т. ч. тяжелых. По биологическому фактору условия труда работников инфекционных, туберкулезных и др. учреждений относят к 4 классу опасных (экстремальных) условий, если они контактируют с возбудителями особо опасных инфекционных заболеваний. К классу 3.3 (вредные условия труда) относятся условия труда работников, имеющих контакт с другими возбудителями инфекционных заболеваний. В целях решения проблемы профилактики ВИЧ у медицинского персонала необходимо: проводить организационно-методическую работу с руководителями учреждений и медицинским персоналом; обеспечить медицинских работников безопасными средствами и создать необходимые условия труда; проводить регулярное обучение и тренинг медперсонала в целях закрепления навыков правильного проведения манипуляций; вести необходимую документацию (в случае производственной травмы); применять меры экстренной защиты. Организационно-методическая работа Обязанностями ответственного лица (заместителя главного врача) по профилактике ВИЧ-инфекции, назначенного приказом, являются: работа с медицинским персоналом, его обучение; контроль за соблюдением безопасных методик; контроль за условиями труда и обеспеченностью персонала средствами индивидуальной защиты; контроль за обеспеченностью расходными материалами; ведение журнала учета аварийных ситуаций и составление актов об эпизодах травматизма при работе с пациентами; контроль за правильностью хранения и пополнения аптечки “АнтиВИЧ”. Обучение стандартным мерам предосторожности поможет снизить риск заражения медицинского персонала: эпидемическая настороженность к каждому пациенту и биологическому материалу как потенциально инфицированному; мытье рук; использование средств индивидуальной защиты (халаты, перчатки, маски, щитки, очки); вакцинация против гепатита В; эргономика рабочего места: удобное расположение пациента и средств для проведения инъекций, в т. ч. пробирок с разной цветовой маркировкой, контейнеров для сброса колющего инструментария; не разбирать шприцы, не отделять иглы от иглодержателей и капельниц. Наиболее эпидемиологически значимым является колюще-режущий инструментарий, поэтому необходимо использовать безопасные приспособления для сбора использованных шприцев: применять саморазбирающиеся шприцы; складывать шприцы без их разборки в непрокалываемые контейнеры; применять портативные иглоотсекатели “хубкутеры”; применять портативные контейнеры для сброса одной рукой игл с иглодержателями. Если травма произошла Экстренные меры защиты при контакте с кровью поврежденной кожи или слизистых оболочек: кисти рук – руки в перчатках помыть с мылом, снять перчатки, под струей воды выдавить из ранки кровь, обработать ранку кожным антисептиком; глаза – промыть водой, физраствором или КМnО4, сидя, чтобы раствор или вода затекали под веки. Контактные линзы не снимать; носоглотка – сплюнуть жидкость, тщательно прополоскать нос и рот водой, физраствором или КМnО4 несколько раз. Основные принципы послеконтактной профилактики ВИЧ-инфекции Послеконтактная профилактика (ПКП) включает прием короткого курса антиретровирусных препаратов с целью снижения риска ВИЧ-инфекции. Основанием для проведения ПКП являются результаты оценки контакта: высокий риск инфицирования (пациент болен ВИЧ или принадлежит к антисоциальным слоям), глубокое проникновение иглы, видимая кровь. По каждому случаю инфицирования срочно проводят расследование. Аварийную ситуацию регистрируют в журнале учета аварийных ситуаций, указывая дату, место, характер повреждений, проведение первичных профилактических мероприятий. Запись в журнале подтверждается подписью лица, ответственного за профилактику ВИЧ. Затем составляют акт о несчастном случае, указывают дату, время, составляя подробное описание манипуляции, марки инструмента, типа биологической жидкости, глубины повреждения, состояния кожи и слизистых, а также сообщая подробные сведения о пациенте, персонале, постконтактной профилактике и диспансерном наблюдении. Пациента, являющегося потенциальным источником заражения (при его согласии), обследуют на ВИЧ, маркеры гепатитов В и С. Если пациент неизвестен или отказывается от обследования, то риск оценивают на основании эпидемиологических данных: формы контакта и распространенности ВИЧ в данной социальной среде. При обследовании контактировавшего лица (по его согласию) сразу проводят тестирование на антитела к ВИЧ, затем – через 6 нед.,12 нед. и 6 мес. после контакта, даже если ПКП решено не проводить. Целесообразно провести серологические тесты на гепатиты В и С. ПКП необходимо начинать после контакта в течение 2–72 ч. Обычно ПКП назначают на 28 дней. Отсутствие показаний для ПКП: контактировавший был инфицирован; контакт не угрожает заражением (при попадании биологических жидкостей на неповрежденную кожу); контакт с неопасными биологическими жидкостями, не содержащими видимой крови (кал, слюна, моча, пот); известно, что человек не инфицирован ВИЧ (плановые операции); с момента контакта прошло более 72 ч (консультация и последующее наблюдение). В заключение следует обратить внимание читателей, особенно имеющих отношение к подготовке медицинских сестер, а также организаторов работы среднего звена в ЛПУ и самих медсестер на важность обучения безопасным методам забора венозной крови. Речь идет о системах вакуумного взятия венозной крови, использование которых в отличие от традиционного метода полностью исключает контакт с кровью пациента: значительно снижается риск инфицирования пациентов при контаминации инъекционной ранки руками персонала; обеспечивается надежный способ герметичной транспортировки проб крови; пробирки не бьются во время центрифугирования и при перевозке; исключено использование ватно-марлевых тампонов для закупоривания пробирок, что предотвращает профессиональное инфицирование персонала. Преимущество данного способа забора крови очевидно. Однако для взятия крови вакуумными пробирками используют пластиковые иглодержатели. В США с 2004 г. запрещено их повторное использование, а в России практически во всех медицинских учреждениях пластиковые иглодержатели используют повторно. К концу смены в канюле иглодержателя скапливаются микроскопические остатки биологической жидкости (крови), которая может передаваться от пациента к пациенту в течение рабочей смены. Иглодержатели являются такими же одноразовыми изделиями медицинского назначения, как иглы и шприцы. Использование одного и того же иглодержателя создает высокий риск заражения для пациента. Добросовестные медсестры обеззараживают иглодержатели после каждого пациента: они двумя руками извлекают уже использованную иглу из иглодержателя, что неизбежно приводит к травматизму. Таким образом, способ, призванный обезопасить медицинского работника (вакуумный забор крови), превращается в еще один опасный фактор передачи инфекции. Необходимо обучать медицинский персонал правильной методике забора крови, подчеркивая, что иглы вместе с иглодержателем необходимо, не разбирая, сбрасывать в непрокалываемый контейнер с пазом для безопасного отделения иглы от иглодержателя. Медицинский персонал должен знать свои права на безопасные условия труда, понимать необходимость иммунизации против гепатита В до начала медицинской практики в учреждении. Таким образом, внедрение современных безопасных методик и стандартизация процедуры забора венозной крови у пациентов позволит значительно уменьшить потенциальный риск внутрибольничного инфицирования, снизить эпидемиологическое значение взятия крови как фактора передачи, в т. ч. ВИЧ-инфекции. 6. Состав аварийной аптечки. 1. 70%-ый раствор этилового спирта; 2. 5%-ый спиртовой раствор йода; 3. 1%-ый раствор протаргола; 4. 1%-ый водный раствор борной кислоты; 5. 1%-ый раствор азотнокислого серебра; 6. 0,05%-ый раствор марганцовокислого калия; 7. навески: - протаргола, - борной кислоты, - азотнокислого серебра, - марганцовокислого калия; 8. стерильная дистиллированная вода; 9. напалечники; 10. пипетки; 11. ножницы; 12. мерная посуда; 13. превязочный материал; 14. бактерицидный пластырь; 15. перчатки; 16. халат; 17. 3%-ый раствор хлорамина; 18. 6%-ый раствор перекиси водорода. ДЕЙСТВИЯ МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА В СЛУЧАЕ ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО КОНТАКТА: Под профессиональным контактом понимают любой прямой контакт слизистых оболочек, поврежденных и не поврежденных кожных покровов с потенциально инфицированными биологическими жидкостями при исполнении профессиональных обязанностей. Если произошло попадание биоматериала на одежду: Перед снятием одежды перчатки обеззараживаются. При незначительных загрязнениях биологической жидкостью одежда снимается, помещается в пластиковый пакет и направляется в прачечную без предварительной обработки, дезинфекции. При значительном загрязнении одежда замачивается водном из дезинфектантов, используемых в учреждении (кроме 6%-й перекиси водорода и нейтрального гидрохлорида кальция, которые разрушают ткани)., Личная одежда, загрязненная биологической жидкостью, подвергается стирке в горячей воде (70 °С) с моющим средством. Кожа рук и других участков тела под местом загрязненной одежды протирается 70%-м спиртом. После этого промывается с мылом и повторно протирается спиртом. Загрязненная обувь двукратно протирается ветошью, смоченной в растворе одного из дезинфицирующих средств, используемых в учреждении. Если произошло попадание биоматериала на слизистые оболочки: Ротовая полость - прополоскать 70%-м раствором этилового спирта. Полость носа - закапать 20-30%-й раствор альбуцида. Глаза - промыть водой, после чего закапать 20-30%-йраствор альбуцида. Если произошел контакт с кровью или другими биологическими жидкостями при неповрежденной коже: срочно обработать место загрязнения одним из дезинфектантов (70%-м раствором спирта, 3%-м раствором перекиси водорода, 3%-м раствором хлорамина); затем промыть водой с мылом и повторно обработать спиртом. Если произошел контакт с кровью или другими биологическими жидкостями при повреждении кожи (укол, порез): снять перчатки рабочей поверхностью внутрь; выдавить кровь из раны, укола; обработать пораженное место одним из дезинфектантов(70%-м этиловым спиртом, 5%-м раствором йода - при порезах, 3%-м раствором перекиси водорода - при уколах); тщательно вымыть руки с мылом под проточной водой, а затем протереть их 70%-м раствором этилового спирта, на рану наложить пластырь, одеть напальчник; при необходимости продолжить работу - надеть новые перчатки. Дальнейшие действия при профессиональном контакте: Во всех лечебно-профилактических учреждениях необходимо вести 'Журнал регистрации аварий'. Регистрации в журнале подлежат аварийные ситуации, связанные с попаданием большого количества крови или другого биологического материала на обширную раневую поверхность. После регистрации контакта медработникам предлагается пройти тестирование на наличие антител к ВИЧ для определения исходного ВИЧ-статуса. Параллельно проводится обследование на ВИЧ пациента, с биологическими жидкостями которого произошел контакт. Первое обследование медицинского работника проводится непосредственно после аварии. Положительный результат будет свидетельствовать о том, что работник инфицирован, но авария не является причиной заражения. Если результат отрицательный, повторное обследование проводится через 6 месяцев. Результаты обследования медицинских работников на ВИЧ-инфекцию являются строго конфиденциальными. Сотруднику на период наблюдения запрещается сдача донорской крови (тканей, органов). О произошедшей аварии и проведенных в связи с этим мероприятиях немедленно информируется руководитель учреждения и председатель комиссии по внутрибольничным инфекциям. О произошедшей аварии и проведенных в связи с этим мероприятиях немедленно информируется руководитель учреждения и председатель комиссии по внутрибольничным инфекциям. ПОСТКОНТАКТНАЯ ПРОФИЛАКТИКА Согласно приказу Министерства здравоохранения Республики Беларусь от 04.08.1997 г. № 201 «Об изменении организации работы по ВИЧ-инфекции в ЛПУ республики»: «...проводится при попадании большого количества крови или биологической жидкости на раневую поверхность или слизистые оболочки и состоит в приеме ретровира (зидовудина, азидотимидина - АЗТ) или его аналогов в дозе 200 мг каждые четыре часа в течение 3 дней, затем 200 мг каждые шесть часов в течение 25 дней. Начинать профилактический прием АЗТ следует в течение первых 24 часов после аварии, предпочтительно через 1-2 часа, не дожидаясь обследования пациента, который может быть источником заражения. При отрицательном результате обследования пациента химиопрофилактика прекращается. Перед началом приема АЗТ следует взять сыворотку на лабораторное исследование для проверки на серонегативность. Сотруднику на период наблюдения запрещается сдача донорской крови (тканей, органов), женщинам рекомендуется избегать беременности». Постконтактная медикаментозная профилактика (ПКП) ПКП - представляет собой короткий курс профилактического приема антиретровирусных препаратов с целью снижения риска развития ВИЧ-инфекции после возможного инфицирования (произошедшего при исполнении служебных обязанностей или при других обстоятельствах). ПОКАЗАНИЯ ДЛЯ ПОСТКОНТАКТНОЙ ПРОФИЛАКТИКИ: Повреждение кожи острым предметом, загрязненным кровью, жидкостью с видимой примесью крови или другим потенциально инфицированным материалом. Попадание крови, жидкости с видимой примесью крови или другого потенциально инфицированного материала на слизистые оболочки (рот, нос, глаза). Попадание крови, жидкости с видимой примесью крови или другого потенциально инфицированного материала на поврежденную кожу (например, при наличии дерматита, участков обветренной кожи, потертостей или открытой раны). Постконтактная профилактика должна предоставляться во всех медицинских учреждениях, в которых существует потенциальный профессиональный риск заражения ВИЧ. Каждый медицинский работник должен четко осознавать, что такие профилактические мероприятия как соблюдение мер предосторожности и выполнение инструкций при работе с биологическим материалом, снижают риск профессионального инфицирования и внутрибольничного распространения ВИЧ-инфекции. Учитывая отсутствие в настоящее время специфических средств профилактики (вакцины разрабатываются) и отсутствие возможности полного излечения от ВИЧ-инфекции (с помощью многокомпонентного длительного лечения можно достигнуть длительной ремиссии заболевания), соблюдение медицинской сестрой индивидуальных мер предосторожности и безопасных методик оказания медицинской помощи является основным компонентом предупреждения внутрибольничного заражения ВИЧ-инфекцией. 7. Укладка для забора крови Ф-50. Укладка для забора крови на форму 50 1. Бикс. 2. Шприцы с иглами одноразовыми, не менее 2-х. 3. Чистые перчатки. 4. Стеклянные чистые, сухие пробирки с резиновыми пробками 5. Штатив. 6. Стерильные ватные тампоны. 7. 70 градусный этиловый спирт. 8. 1-2% водный раствор борной кислоты для закапывания в глаза. 9. 1-2% раствор проторгола для закапывания в нос. 10. 6% р-р перекиси водорода. 11. Лейкопластырь. 12. Флакон с сухим марганцово-кислым калием.